CARACTERIZAÇÃO SINTOMATOLÓGICA DE VÍRUS DE MELANCIA ISOLADOS DO ESTADO DO TOCANTINS
Resumo
O objetivo deste trabalho foi o da caracterização dos sintomas dos principais vírus isolados (nos) campos produtivos de melancia do estado do Tocantins. As amostras foram coletadas em quatro áreas produtoras de melancia: Formoso do Araguaia (F.A.), Lagoa da Confusão (L.C.), Porto Nacional (P.N.) e Gurupi (G.U.). A identificação foi realizada por teste imunoenzimático (dot-ELISA). Em seguida, os isolados foram inoculados em casa de vegetação em plantas de abóbora cv. Caserta e melancia cv. Crimsom sweet. As inoculações foram realizadas com os vírus CMV, ZYMV, PRSV-W, WMV, ZLCV e infecção mista providas das regiões citadas acima. O sucesso das inoculações foi reconfirmado pelo teste dot-ELISA, realizado 30 dias depois a inoculação. Os resultados mostraram que os vírus mais severos em plantas de abóbora e melancia foram: CMV de P.N. e L.C.; ZYMV de G.U. e P.N.; PRSV-W de G.U. e P.N. e WMV de L.C. Os vírus causaram os sintomas mais severos em infecções simples em plantas de abóbora Caserta em ordem decrescente de importância foram os isolados de CMV de P.N. e L.C.; ZYMV de G.U. e P.N.; PRSV-W de G.U. e P.N. e WMV de L.C. Já para as plantas de melancia cv. Crimsom sweet foram os isolados de CMV da L.C., P.N. e G.U.; ZYMV de F.A., L.C. E P.N.; PRSV-W da L.C. e G.U. e WMV de F.A. e G.U. O CMV foi o mais agressivo mesmo em associação com outras estirpes seguidas da estirpes PRSR-W e ZYMV tiveram sintomas severo e menor tempo de apresentação dos primeiros sintomas nas quatro regiões.
Referências
Aguiar, R.W.S.; Rodrigues, A.; Portella, A.C.F.; Lopes, M.M.; Lima, M.F.; Ro, R. & Nagata, T. (2015). Serological Identification of Virus in Watermelon Production Fields in the Tocantins State. Brazilian archives of biology and technology 58(2): 192-197. http://dx.doi.org/10.1590/S1516-8913201400219.
Azevedo, S.M.; Maluf, W.R.; Faria, M.V.; De Resende, J.T.V.; De Menezes, C.B. & Nascimento, I.R. (2012). Inheritance of resistance to the Papaya ringspot virus-watermelon strain (PRSV-W) from watermelon accession 'PI 595201'. Crop Breeding and Applied Biotechnology 12(1): 67-75. http://dx.doi.org/10.1590/S1984-70332012000100009
Cretazzo, E.; Padilha, C.; Carambula, C.; Hita, I.; Salmerón, E. & Cifre, J. (2010). Comparison of the effects of different virus infections on performance of three Majorcan grapevine cultivars in field conditions. Annals of Applied Biology 156(1): 1-12. http://dx.doi:10.1111/j.1744-7348.2009.00355.x.
Desbiez, C.; Gal-On, A.; Girard, M.; Wipf-Scheibel, C. & Lecoq, H. (2003). Increase in Zucchini yellow mosaic virus Symptom Severity in Tolerant Zucchini Cultivars Is Related to a Point Mutation in P3 Protein and Is Associated with a Loss of Relative Fitness on Susceptible Plants. Phytopathology 93(12): 1478-1484. http://dx.doi.org/10.1094/PHYTO.2003.93.12.1478
Desbiez, C; Joannon, B.; Wipf-Scheibel, C.; Chandeysson, C. & Lecoq, H. (2009). Emergence of new strains of Watermelon mosaic virus in South-eastern France: Evidence for limited spread but rapid local population shift. Virus Research 141(2): 201-208. http://dx.doi:10.1016/j.virusres.2008.08.018
Domiciano, G.P.; Resende, R.S.; Rodrigues, F.A. & Da Matta, F.M. (2009). Alterações na fotossíntese de plantas infectadas por patógenos. Revisão Anual de Patologia de Plantas, 17: 305-339.
Fauquet, C.M.; Mayo, M.A.; Maniloff, J.; Desselberger, U. & Bali, L.A.A. (2005). Virus Taxonomy: Eighth Report of the International Committee on Taxonomy of Viruses. 2nd. San Diego, Ca: Academic Press. 1162p.
Filho, F.A.C.R.; Carvalho, K. F.; Lima, J.A.A.; Queiroz, M.A.; Paiva, W.O. & Nascimento, A.K.Q. (2010). Fontes de resistência em melancia e meloeiro a vírus do gênero Potyvirus. Revista Brasileira de Ciências Agrárias 5(2): 187-191. http://dx.doi: 10.5039/agraria.v5i2a643
Fletcher, J.D.; Wallace, A.R. & Rogers, B.T. (2000). Potyviruses in New Zealand buttercup squash (Cucurbita maxima Duch.): yield and quality effects of ZYMV and WMV 2 virus infections. New Zealand Journal of Crop and Horticultural Science 28(1): 17-26. http://dx.doi:10.1080/01140671.2000.9514118
Giampan, J.S.; Rezende, J.A.M. & Silva, R.F. (2007). Reaction of cucurbits species to infection with Zucchini lethal chlorosis virus. Scientia Horticulturae 114(2): 129-132. http://dx.doi:10.1016/j.scienta.2007.05.015
Gil, L.; Yaron, I.; Shalitin, D.; Sauer, N.; Turgeon, R. & Wolf, S. (2011). Sucrose transporter plays a role in phloem loading in CMV-infected melon plants that are defined as symplastic loaders. The Journal Plant 66(2): 366-374. http://dx.doi:10.1111/j.1365-313X.2011.04498.x
Herrington, M.E.; Prytz, S.; Wright, R. M.; Walker, I.O.; Brown, P.; Persley, D.M. & Greber, R.S. (2001). ‘Dulong QHI’ and 'Redlands Trailblazer', PRSV-W-, ZYMV-, and WMV-resistant winter squash cultivars. Hortscience 36(4): 811-812.
Lima, M.F. & Alves, R.C. (2011). Levantamento de vírus em curcubitáceas no Brasil, no período 2008-2010. Boletim de Pesquisa e Desenvolvimento 76: Embrapa Hortaliças, 26p. Disponível em: http://www.cnph.embrapa.br/paginas/serie_documentos/publicacoes2011/bpd_76.pdf. Acesso em: 06 Dez. 2015.
Lima, M.F. (2011). Viroses de cucurbitáceas. Ministério da Agricultura, Pecuária e Abastecimento (MAPA), Circular Técnica 95, Brasília, DF, Disponível em: http://www.cnph.embrapa.br/paginas/serie_documentos/publicacoes2011/ct_95.pdf. Acesso em: 26 Nov. 2015.
Lima, M.F; Nagata, T.; Neves, F.M.; Inoue-Nagata, A.K.; Moita, A.W.; Sousa, C.; Della Vecchia, M.; Rangel, M.G.; Dias, R.C.S.; Dutra, L.S. & Ávila, A.C. (2009) Detecção por sorologia do Melon yellowing associated virus (MYaV) em áreas produtoras de melão no Nordeste brasileiro. Horticultura Brasileira 27(4): 478-483.
Lopez-Fabuel, I.; Wetzel, T.; Bertolini, E.; Bassler, A.; Vidal, E.; Torres, L.B.; Yuste, A. & Olmos, A. (2013). Real-time multiplex RT-PCR for the simultaneous detection of the five main grapevine viruses. Journal of Virological Methods 188(2): 21-24. http://dx.doi:10.1016/j.jviromet.2012.11.034.
Mandakombo, Y.N.B.; Reynaud, B. & Jean-Michel, L. (2013). Epidemiological assessment of cassava mosaic disease in Central African Republic reveals the importance of mixed viral infection and poor health of plant cuttings. Crop Protection 44: 6-12. http://dx.doi:10.1016/j.cropro.2012.10.010
Mandal, B.; Csinos, A.S.; Martinez-Ochoa, N. & Pappu, H.R. (2008). A rapid and efficient inoculation method for Tomato spotted wilt tospovirus. Journal of Virological Methods 149(1): 195-198. http://dx.doi:10.1016/j.cropro.2012.10.010
Nagata, T.; Carvalho, K.R.; Sodre, R.D.A.; Dutra, L.S.; Oliveira, P.A.; Noronha, E.F.; Lovato, F.A.; Resende, R.D.O.; De Avila, A.C. & Inoue-Nagata, A.K. (2007). The glycoprotein gene of Chrysanthemum stem necrosis virus and Zucchini lethal chlorosis virus and molecular relationship with other tospoviruses. Virus Genes 35(3): 785-793. http://dx.doi: 10.1007/s11262-007-0107-y
Nascimento, I.R.; Santos, L.B.; Sarmento, R.A.; Figueira, A.R.; Oliveira, G.I.S. & Aguiar, R.W.S. (2012). Reação fenotípica de genótipos de abóboras ao vírus da mancha anelar do mamoeiro, estirpe melancia (Pappayaringspotvirus, strainwatermelon - PRSV-W). Bioscience Journal 28(2): 191-197.
Pappu, H.R.; Jones, R.A.C. & Jain, R.K. (2009). Global status of tospovirus epidemics in diverse cropping systems: Successes achieved and challenges ahead. Virus Research 141(2): 219-236. http://dx.doi: 10.1016/j.virusres.2009.01.009
Ramos, N.F.; Lima, J.A.A. & Goncalves, M.F.B. (2003). Efeitos da interação de potyvirus em híbridos de meloeiro, variedades de melancia e abobrinha. Fitopatogia Brasileira 28(2): 199-204.
Rotenberg, D.; Jacobson, A.L.; Schneweis, D.J. & Whitfield, A.E. (2015). Thrips transmission of tospoviruses. Current Opinion in Virology 15: 80-89. http://dx.doi:10.1016/.j.coviro.2015.08.003
Sampol, T.; Bota, J.; Medrano, H. & Flexas, J. (2003). Analysis of the virus-induced inhibition of photosynthesis in malmsey grapevines. New Phytologist 160(2): 403-412. http://dx.doi:10.1046/j.1469-8137.2003.00882.x
Santos, C.D.G.; Ávila, A.C.D.; Inoue-Nagata, A.K. & Resende, R.O. (2004). Espécies vegetais hospedeiras de begomovírus isolados de tomateiro em Goiás e no Distrito Federal. Fitopatologia Brasileira 29(4): 450-455. http://dx.doi.org/10.1590/S0100-41582004000400017
Tatineni, S.; Kovacs, F. & French, R. (2014). Wheat streak mosaic virus infects systemically despite extensive coat protein deletions: identification of virion assembly and cell-to-cell movement determinants. Journal Virology 88(2): 1366-80. http://dx.doi:10.1128/JVI.02737-13
Tsompana, M.T. & Moyer, J.W. (2008). Tospovirus. In: Mahy, B.W.J. & van Regenmortel, M.H.V. Encyclopedia of Virology. 3rd ed. San Diego, Ca: Elsevier, p. 157-163.
Yuki, V.A., Rezende, J.A. M., Kitajima, E.W., Barroso, P.A.V., Kuniyuki, H., Groppo, G.A. & Pavan, M.A. (2000). Occurrence, distribution, and relative incidence of five viruses infecting cucurbits in the state of São Paulo, Brazil. Plant Disease 84: 516-520.
Direitos autorais
Após a aceitação de um artigo, os autores serão convidados a preencher um formulário de " licença exclusiva” que permitirá a divulgação do artigo na forma de acesso aberto. Para podermos fazer o trabalho de publicação e divulgação do artigo de pesquisa precisamos dos direitos para publicação. Para artigos de acesso aberto, usamos um acordo exclusivo de licenciamento em que os autores mantêm os direitos autorais em/de seu artigo.
Neste acordo os autores mantêm direitos sobre:
-Patentes e outros direitos de propriedade intelectual no artigo
-O direito de crédito para o trabalho publicado
Política de Acesso
Os artigos pulicados nesta revista são de acesso aberto, devem ser compartilhados livremente desde que a fonte e seus autores sejam citados de maneira adequada, visando à preservação dos direitos autorais e propriedade intelectual. Os trabalhos publicados na revista serão simultaneamente licenciados sob a Creative Commons Attribution License (CC BY-NC-ND), permitindo o compartilhamento do artigo com reconhecimento da autoria do trabalho e da publicação inicial nesta revista.